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标题:ITGB6 modulates resistance to anti-CD276 therapy in head and neck cancer by promoting PF4+ macrophage infiltration
杂志:Nature Communication
日期:2024-08-16
临床问题:头颈部鳞癌可以采用抗CD276进行治疗,但临床上有治疗应答的差异。
探索方向:基于组学数据表征应答组和非应答组肿瘤微环境(Tumor microenvironment, TME)的差异,筛选驱动抗CD276耐药的基因,并尝试寻找耐药相关的生物学标志物,助力临床精准治疗。
文章设计了对照IgG治疗组、α-CD276抗体治疗耐药组、α-CD276抗体治疗敏感组三组进行后续比较。针对抗CD276治疗应答机制的差异,文章穷举了免疫微环境中的成分,依次做出假设并通过实验验证。最终发现,抗CD276治疗应答差异可能和肿瘤细胞凋亡和免疫微环境有关,最终作者进一步从免疫微环境中寻找上游。
假设一:抗CD276治疗应答差异归因于CD276表达水平的变化
文章的验证方法:在对照IgG治疗组、α-CD276抗体治疗耐药组、α-CD276抗体治疗敏感组或对照IgG治疗组,这三组样本中免疫组化检测CD276表达水平,结果发现三组之间没有显著差异。最终得出结论CD276抗体治疗结果与CD276表达水平无关。
这一假设和验证提示我们需要审慎看待目前临床作为治疗指征的标志物(如PD-L1、HRD、MSI等),在针对这些标志物的分析上可以采用相似的实验设计。
假设二:抗CD276治疗应答差异归因于肿瘤增殖性的变化
文章的验证方法:在对照IgG治疗组、α-CD276抗体治疗耐药组、α-CD276抗体治疗敏感组或对照IgG治疗组,这三组样本中免疫组化检测Ki67表达水平,结果发现三组之间没有显著差异。最终得出结论CD276抗体治疗结果与肿瘤增殖性无关。
假设三:抗CD276治疗应答差异归因于肿瘤凋亡水平的变化
文章的验证方法:在对照IgG治疗组、α-CD276抗体治疗耐药组、α-CD276抗体治疗敏感组或对照IgG治疗组,这三组样本中免疫组化检测凋亡标志物cleaved-caspase-3的表达水平,结果发现肿瘤细胞三组之间有显著差异,间质细胞无差异。最终得出结论CD276抗体治疗结果与肿瘤组织凋亡水平可能有关。
假设四:抗CD276治疗应答差异归因于免疫微环境差异
文章的验证方法:在对照IgG治疗组、α-CD276抗体治疗耐药组、α-CD276抗体治疗敏感组或对照IgG治疗组,这三组样本中多重免疫组化检测凋亡标志物CD8和GZMB的表达水平,结果发现三组之间有显著差异。治疗敏感组相较于耐药组和对照组的CD8+ T细胞和CD8+ GZMB+ T细胞浸润更多。
阶段一回顾性分析认为免疫微环境差异是应答差异的机制,具体而言即发现CD8+ T细胞和CD8+ GZMB+ T细胞浸润的不同。由此,作者设计如下实验:将治疗应答组的小鼠分为四组——对照组、CD4耗竭组、CD8耗竭组和CD4、CD8双耗竭组,并观察相应表型。
文章通过动物实验发现,CD8+ T细胞耗竭逆转了治疗敏感组的疗效;而CD4+ T细胞耗竭并没有对治疗效果有影响。这里的实验设计是前瞻性的,因此能够证明CD8+ T细胞和抗CD276治疗的效果有因果关系。
文章对1个耐药样本、1个敏感样本和2个对照样本进行了单细胞测序,并进一步将恶性的上皮细胞分为4种亚型(Cycling,Differentiated,p-EMT,Stress),随后进一步基于Scissor算法筛选了与预后不良相关的肿瘤细胞,及与CD276治疗抵抗及敏感相关的肿瘤细胞,最后将预后不良相关肿瘤细胞中异常表达的基因与CD276治疗抵抗相关肿瘤细胞中异常表达的基因取交集,最终筛选出3个交集基因(候选基因)——ITGB6,PRNP和CAV1。
生信的作用主要是为了找到关键基因,缩小研究范围。值得注意的是,如这里的差异分析,很多生信分析的过程是相关性的分析,没有因果关系的证明。
通过生物信息学找到三个可能相关的基因。文章对三个候选基因均进行了基因功能实验——对候选基因进行基因敲除,并观察基因敲除后对肿瘤生长和对CD276治疗响应的影响。结果发现ITGB6基因敲除可以增加肿瘤对CD276治疗的敏感性。所以,ITGB6成为最终的主角基因。
确定关键基因后,作者做了一个简单的表型验证,即比较CD276治疗敏感组和耐药组ITGB6的免疫荧光染色差异,发现敏感组的ITGB6表达更低,并且CD276的表达和ITGB6之间无显著相关性,这进一步表明CD276表达丰度不能作为抗CD276的治疗指征。这一验证思路比较常见。
在口腔上皮中条件性敲除ITGB6并诱导头颈癌小鼠模型中,耗竭CD8+ T细胞可以显著逆转抗CD276介导的侵袭性生长抑制。而耗竭CD4+ T细胞则无明显影响。
接着,作者作者使用高表达ITGB6的SCC15细胞系,基于CRISPR-Cas9技术,敲除ITGB6,发现并没有改变CD276蛋白的表达,这和前文动物组织的IHC结果一致。利用这个细胞系,作者还发现了敲除后肿瘤的增殖性和克隆形成能力没有明显变化。有趣的是,敲除后肿瘤本身的凋亡水平没有明显改变,这和前面直接在肿瘤组织中看到的结论不同。结合上述发现,ITGB6很可能不是通过肿瘤细胞本身直接参与了耐药机制,这强烈提示我们去探索肿瘤微环境中的其他成分。
为了加强实验结果的可信度,作者从时空的角度进一步探索ITGB6和肿瘤表型的变化。ITGB6蛋白的表达和肿瘤的进展显著相关,在耐药组中发现了ITGB6的显著升高。
在文章中,研究者们通过基因敲除技术来探究ITGB6基因在头颈部鳞状细胞癌(HNSCC)中的作用。
基因敲除的准备:
基因敲除的实施:
对照组的设置:
基因敲除后的效果观察:
观察结果:
文章首先比较了敲除和对照动物模型肿瘤的成熟率、肿瘤的大小和组织学分度,发现了显著的差异。接着,对肿瘤进行多重免疫组化,观察到ITGB-cKO小鼠肿瘤浸润了更多的GZMK+ CD8+ T细胞。同时,ITGB6-cKO小鼠和ITGB6-ctl小鼠肿瘤的Ki67和基质细胞凋亡水平没有明显差异,肿瘤细胞本身凋亡水平有差异,这和前面细胞实验、耐药组和敏感组组的对比实验所得的结论是一致的。进一步加强了结论的可信度,并且把研究的重点放在免疫微环境。
和前面的实验一样,作者将cKO组小鼠随机分为4组,给于CD4、CD8和CD4\CD8耗竭治疗,结论与前一致。CD8耗竭逆转了抗CD276的治疗效果。
Treg可以表征局部的抑制性微环境,但是通过流式并没有发现组间的明显差异,这为后面探索其他细胞群做了铺垫。
模型建立:
α-CD276治疗:
治疗后处理:
样本收集:
监测:
肿瘤生长:
肿瘤细胞标志物:
细胞凋亡:
基质细胞凋亡:
免疫细胞浸润:
实验结果表明,ITGB6的缺失和α-CD276治疗的联合使用可能对HNSCC有协同治疗效果,这主要体现在肿瘤生长的减缓、肿瘤细胞凋亡标志物的增强以及免疫细胞浸润的增加。
在上一个段落已经进行了Proportion analysis,这里是更进一步,对细胞之间的相互作用进行探索,从而确定关键的细胞群。
为探讨ITGB6介导的α-CD276抗性机制,研究者对显示治疗抗性的ITGB6-ctl和ITGB6-cKO小鼠的肿瘤进行了单细胞RNA测序分析。共获取了22,376个细胞。通过数据整合和降维,发现ITGB6-ctl和ITGB6-cKO样本的分布有显著重叠,识别出四种主要细胞类型:上皮细胞、免疫细胞、成纤维细胞和内皮细胞。
通过CopyKAT分析发现了932个非整倍体细胞。为理解ITGB6在HNSCC中α-CD276介导的免疫反应中的作用,研究者分离了免疫细胞并将其分为六大类,发现与对照组相比,ITGB6-cKO小鼠中的单核细胞/巨噬细胞/树突状细胞(MoMΦDC)和γδT细胞比例下降,而中性粒细胞、CD8 T细胞和CD4 T细胞比例上升。进一步通过CellPhoneDB分析发现,肿瘤细胞与PF4巨噬细胞之间的CX3CL1-CX3CR1相互作用在ITGB6-cKO肿瘤中显著减少。
此外,研究表明,ITGB6的敲除会显著下调肿瘤细胞中CX3CL1的mRNA和蛋白表达。通过SCENIC分析和在线工具,发现Stat3是与CX3CL1基因启动子相关的转录因子。随后,通过ChIP-qPCR实验证实STAT3能够结合CX3CL1基因的启动子区域,而STAT3的敲除显著减少了这种结合。ITGB6敲除还减少了FAK/SRC的磷酸化。此外,研究显示CX3CR1在PF4巨噬细胞中特异性表达,但Tregs在接受α-CD276治疗的ITGB6-cKO组中并未显著变化。
该部分的论述思路和技术路线如下:
研究目标:探讨ITGB6在头颈鳞状细胞癌(HNSCC)中介导的α-CD276抗性机制。
实验设计:
免疫细胞分析:
细胞亚型分析:
分子机制探究:
信号通路研究:
结论和验证:
基于单细胞数据提取PF4+ 巨噬细胞的特征基因,在TCGA数据库中进行基因评分并评估和预后的关系。此外还评估了和其他病理学参数的联系,这一步是常用的验证方法。
接着,作者通过PF4敲除鼠进一步探索了肿瘤和免疫细胞表型,同时在动物模型中强调了PF4和IGTB6表达的相关性,这进一步验证了PF4是ITGB6作用的下游。
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